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PRÁCTICA Nº5: TINCIÓN DE ZHIEL-NEELSEN.

Actualizado: 18 dic 2018


FUNDAMENTO

Esta técnica nos permite la identificación de bacterias ácido-alcohol resistentes BAAR, generalmente tienen forma de bacilos.

Estas poseen paredes bacterianas con ácidos grasos de cadena larga y ceras que las hacen resistentes a la decoloración, por tanto con la tinción de GRam unicamente se identificarian las Gram + y con esta tinción se pueden diferenciar.

Las bacteria ácido alcohol resistentes (BAAR) se observarán de un color rojo sobre fondo azul; y las no resistentes se observaran de color azul.


OBJETIVO

Identificar BAAR y estudiar la morfología.


UTILIDAD CLÍNICA

Entre la BAAR destacan las micobacterias como Mycobacterium tuberculosis y Mycobacterium leprae. Esta técnica es útil para el diagnóstico y estudio de estas enfermedades.

Debida a su alta patogenicidad no usamos este tipo de muestas.


APARATAJE

Microscopio óptico Olympus.


MUESTRA

Staphylococus aureus.


REACTIVOS

  • Alcohol.

  • Fucsina fenicada.

  • Decolorante (alcohol ácido).

  • Azul de metileno.




MATERIAL NECESARIO

  • Cubeta.

  • Algodón.

  • Asa de siembra de platino con mango de plástico.

  • Papel de filtro.

  • Paralelas.

  • Agua destilada en fraco lavador.

  • Mechero Bunsen.

  • Portaobjetos.

  • SSF

  • Aceite de inmersión.

  • Pinzas de madera

PROCEDIMIENTO

Antes de empezar la realización de la práctica, el puesto de trabajo debe de estar adecuadamente preparado con los materiales necesarios y sin olvidar la bata y guantes

  1. Preparar un frotis con S. aureus.

  2. Encima del porta por la cara donde se ha realizado el frotis ponemos papel de filtro y posteriormente cubrirlo con Fucsina fenicada durante 1 min.

  3. Preparamos la fuente calor: cubrimos la punta del asa de siembra con algodón empapado en alcohol y en el fregadero colocamos una rejilla y aplicamos la fuente de calor. Mantener así 5 minutos. *Cada vez que veamos la preparación algo seca echar más fucsina*.

  4. Quitamos el papel de filtro y lavamos la preparación con agua.

  5. Decoloramos con alcohol-ácido 30 segundos.

  6. Cubrimos con Azul de metileno (colorante de contraste) durante 1-2 minutos.

  7. Lavamos con agua destilada

  8. Dejamos secar.

  9. Observar al microscopio con el objetivo de 100x.


RESULTADO Y OBSERVACIONES

En el caso del aureus observamos que no es BAAR.

En la siguiente imagen podemos diferencia en azul las no BAAR y en rojo las BAAR.



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